99问答网
所有问题
当前搜索:
page胶浓度与蛋白大小
125kd的
蛋白
用多少
浓度
的
胶
合适
答:
SDS-PAGE凝胶浓度是由丙烯酰胺的浓度决定的,
加入的丙烯酰胺越少胶浓度越稀,越稀的胶浓度越适合越大分子量蛋白的分离
。正常配制的胶浓度一般是15%,12%,10%,7 所以
125kd的蛋白用7%浓度的胶比较合适
【请问】怎样根据
蛋白质大小
确定SDS-
PAGE
电泳分离胶的
浓度
?
答:
你可以用12%的
胶浓度
,如果marker是fermentas家的SDS非预染marker(批号SM0431)的话,可以看到116kd 66.2kd 45kd 35kd 25kd 18.4kd 14.4kd,这样你的目的条带20kd就差不多在整块胶的中间
怎样根据
蛋白质大小
确定SDS-
PAGE
电泳分离胶的
浓度
答:
首先你要将上述药品粉末按照19:1或29:1的比例用水配置成母液(一般为30%,也是m/V)而10%,12%,16%你自然也就知道应该用多少的母液去配制了.相信如何配胶你是知道的.
8KDa
蛋白
在SDS-
PAGE
电泳时分离胶的
浓度
该选择
多大
答:
浓缩
胶浓度
低;分离胶浓度高于浓缩胶,一般不小于5%。8KD的
蛋白质
可能就要用Tricine–SDS-
PAGE
系统,因为浓缩胶和分离胶浓度太大,电泳速度很忙,很可能引起电泳带弥散。
蛋白质
SDS-
PAGE
电泳分离
胶和
浓缩胶的
浓度
如何确定?上样缓冲液的倍数如何...
答:
1,看目的
蛋白
的
大小
一般actin以下的可以跑12
胶
红线左右可以用12或10跑 几百的很大的用6的胶 小蛋白12的10的一般都能跑 如果不考虑效率的话...能跑多慢跑多慢,越慢跑的越好看 2,看样品
浓度
多少,以及你想用几次 通常我们是定到4微每微,总量100微,用10次 如果浓度小的话定到2用5次 ...
350kd的
蛋白
用多少
浓度
的SDS-
PAGE 胶
答:
SDS-
PAGE
电泳测出来的是亚结构分子量的
大小
(打开了二硫键).很少有亚单链这么大的.如果确定了,用8%或者更低点,如6%.
10kda
蛋白
用多少
浓度
的
page
答:
8-10%的分离胶,电泳时注意下marker,别把17KDa跑出来就行,湿转100V90min妥妥的
蛋白大小
为60kd,用多少
浓度
的分离
胶
答:
你好!
胶浓度
同
蛋白
其迁移速率所采用裁膜式于蛋白迁移位置要事先预判10%胶浓度高迁移慢些都相同位置裁看条带6,8%胶膜需要裁更靠缘或者前裁掉膜半部再拿做做实验试试 电泳各种素影响其配置完全胶浓度变化述原需要考虑 仅代表个人观点,不喜勿喷,谢谢。
sas-
page浓度
答:
问题应该是sds-
page
电泳时
蛋白
样品的浓度需要
多大
合适吧,分离
胶浓度
的选择主要取决于目的蛋白的分子量
大小
,不同的分离胶浓度对不同的目的蛋白分子量的分辨率不一样。下层胶):不同浓度的SDS-
PAGE
分离胶的最佳分离范围:SDS-PAGE分离胶浓度,最佳分离范围:6%胶,50-150kD 8%胶,30-90kD 10%胶,20...
...77KD和80KD的两个
蛋白
,要用
多大浓度
的SDS-
PAGE胶
能有较好的分辨率...
答:
一般凝
胶浓度
低是容易出现条带模糊的情况。个人手法是:用好点的材料制备凝胶来进行分析。10%的浓度可以用来分离这两种
蛋白
,将电泳电压在后半程调高可改善条带清晰度。也可以调高分离胶浓度至12%,但差别会较10%的更小。是在不行可以考虑用梯度胶分。补充回答:“用好点的材料”是说的丙烯酰胺和甲...
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
涓嬩竴椤
灏鹃〉
其他人还搜
分离胶浓度和蛋白大小
sdspage胶浓度对应蛋白大小
page胶浓度怎么选择
蛋白质大小与胶浓度的选择
蛋白电泳浓度
不同浓度蛋白胶分离范围
150kd蛋白用多大浓度的胶
分离胶浓度与蛋白大小关系
sdspage蛋白浓度限度