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如何分析SDS-PAGE电泳图扫描后图上蛋白条带的量
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推荐答案 推荐于2018-03-05
SDS-PAGE检测蛋白是一种定性的检测方法,图上蛋白条带不能做到精确定量。
一般只能通过一些对照样品来比较分析图上蛋白条带的量。
比如用已知蛋白量的样品(BSA)和需检测的蛋白样品跑在附近的泳道,通过对比染色后样品的大小,颜色,深浅来估计出需检测蛋白样品的量。
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其他回答
第1个回答 2020-12-08
我记得是这样的。SDS-PAGE检测蛋白是一种定性的检测方法,图上蛋白条带不能做到精确定量。
一般只能通过一些对照样品来比较分析图上蛋白条带的量。
比如用已知蛋白量的样品(BSA)和需检测的蛋白样品跑在附近的泳道,通过对比染色后样品的大小,颜色,深浅来估计出需检测蛋白样品的量。
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SDS-PAGE图
估算
蛋白
浓度 求指导
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(1)使用适当的软件(例如ImageJ)来分析样品在SDS-PAGE图上的条带的灰度值
。(2)确保在分析时,背景已被适当减去以避免偏差。3、利用标准曲线:利用前述制作的标准曲线,通过样品条带的灰度值估算样品的蛋白浓度。4、数据验证:如果可能,用其他方法(例如BCA蛋白浓度测定法)来验证SDS-PAGE图估算的...
sds电泳图
咋看
答:
通过sds-page凝胶成像系统拍摄图片,注意调整对比度
。如果是写报告的话,可以标记出marker各条带的分子量以及亮度,详见说明书;然后说明扩增片段与目的片段大小相同,均为xx;如果图像上有杂带可以分析一下,比如可能是引物二聚体之类的情况,以便下次实验可以酌量调整退火温度或者各成分的用量。
sds-page
凝胶成像怎么
分析
答:
sds-page
凝胶成像分析步骤如下:1、确定蛋白质的相对分子量:根据凝胶
上蛋白质带的
大小和位置,可以大致确定蛋白质的相对分子量,一般可借助标准
蛋白质电泳条带
作为参照。2、比较不同样品之间的蛋白质组成:将同一种类型的样品在
SDS-PAGE
凝胶上分离后,可以比较它们之间的蛋白质组成差异,从而分析不同样品...
如何
利用
SDS-PAGE
判定
蛋白质的
纯度和分子量
答:
SDS-PAGE
判定
蛋白质的
纯度:若该蛋白质是单肽链蛋白质,则电泳得到的只有一
条蛋白带
(两条色带:一条为溴酚蓝,一条为蛋白带);若得出多
条电泳带
,则应该用非
SDS-PAGE
进行电泳,得出单一蛋白带则为单一蛋白质 SDS-PAGE判定蛋白质的分子量:定义:R=de/do R为迁移率,de为
蛋白质电泳
迁移距离,do...
sds-page电泳图
答:
这样你就可以知道你的
条带
所代表的
蛋白质的
质量了.其次,你的
电泳图
最下面颜色很深的一大片是正常情况下不应该出现的.出现的原因可能是在提取
蛋白的
过程中出现的小分子
量蛋白
的杂质.胶跑的很直:)ps,最后不是溴酚蓝...这个是染考马斯蓝的结果吧?还有,不同的公司marker不同的,你要自己查......
怎么看
蛋白质电泳分析
结果图,以及它的原理是什么
答:
1.先进行等电聚焦电泳(按照蛋白等电点pI分离):在胶中加入双性电解质溶液,加上电场后建立稳定PH梯度,
蛋白质
溶液加入后建立电场,蛋白以不同PI分离开来。2.然后再进行
SDS-PAGE
(按照分子大小):将上一步的胶加上横向电场,同一PI中聚集的蛋白,由于分子量不同而分开。经染色(一般是银染)得到的...
SDS-PAGE
检测
蛋白质
分子量的基本原理
答:
而与
蛋白质
所
带的
电荷无关,在一定条件下,蛋白质的分子量的对数与电泳迁移率间呈负相关。操作步骤 1、凝胶制备:用两块电泳玻璃板制成垂直板槽(不能漏胶),垂直放置.将配制好的分离胶溶液倒入,滴加入无离子水,待凝胶聚集后,倒出无离子水,用吸水纸吸干,倒入浓缩胶,再插入梳子.2、上样:分别取...
sds-page电泳
测定
蛋白质
相对分子质量,
分析
看不到
条带的
地方是否有蛋白...
答:
SDS-PAGE电泳
是一种将
蛋白质
按照分子量大小分离的方法,通常需要使用染色方法(如Coomassie blue染色)来观察电泳
条带
。如果某些样品在电泳后看不到条带,则可能是由于样品中蛋白质浓度太低或者电泳条件不合适导致的。此时,可以使用Western blot等方法来检测是否存在目标蛋白质。如果Western blot结果呈阳性,...
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