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双酶切体系buffer表
NotI和SalI可不可以
双酶切
答:
可以的啊!takara的酶可以用
buffer
H做公用buffer,而NEB的酶notI-HF 和salI-HF 可以用buffer 4做为公用buffer。还有要注意你的两个
酶切
位点之间有没有保护碱基,如果没有:那还是要分步切的,否则切不开。
双酶切
的问题
答:
如从11kb的载体上
双酶切
1kb的片段,那么载体片段和切下的片段质量比就是10比1,那么荧光强度也是10比1,如果你的原始酶切的质粒质量就不是很多,那么切下的片段就会根本看不到。解决这个问题的方法就是加大原始酶切反应
体系
中的质粒的浓度或者电泳时提高上样量。接着,还有一种可能就是两种酶的酶切...
NE
Buffer
是什么意思。
答:
NE
Buffer
意思是NEB(New England Biolabs)公司生产的能同时作为两种
酶
的公用的
buffer
。 就是这两种酶可以用同一种buffer,而酶的活性不会受影响。NEB(北京)有限公司 New England Biolabs (Beijing) LTD. NEB(北京)有限公司New EnglandBiolabs (Beijing) LTD. 为美国New England Biolabs,Inc.在华投资...
...的EcorI和Hind3是否可以进行
双酶切
,加什么
buffer
怎么查啊?能说的...
答:
可以啊 都是HF的用
BUFFER
4 不然的话用2 NEB网站看一下不就行了
双酶切
老是切不完全
答:
首先,你看你的载体片段和目标片段的亮度比是不是大约10倍(因为一般T载体大小在2.5K~3k左右),如果是的话,那是正常现象。如果你能看见线性化的载体或没有切开的载体,那么建议你换一下新开封的
酶
试试。
双酶切
所用共同的
buffer
在哪一个网站查询
答:
Takara的产品目录上有,可以查的啊。。。
酶切
产物电泳检测无条带这是怎么回事?
答:
2、如果DNA提取质量高,没有蛋白污染,那么过夜没问题,否则也不建议超长时间酶切;3、用多少质粒不是看体积,只要100ng就看得见,先定量质粒。做
双酶切
,如果2个片段都不太小,那么用200ng的质粒保证可以看见。你的质粒DNA加太多了 所以
酶切体系
可以改改,减少DNA和酶的量,减少时间。1小时足够完成...
...I 与Fermentas的BstBI的
双酶切
?如何选择
buffer
?如何进行分步酶切...
答:
怎么是两个不同公司的呢。。。分步
酶切
吧。。。比如先用Takara的
体系
BamHI 先切一下,我一般过夜酶切,然后酚-氯仿抽一下DNA,然后再用Fermentas的体系 BstBI切过夜。。。
载体
双酶切
后消失,怎样解决
答:
减少
酶
用量试下
NEB公司的BamHⅠ和KpnⅠ
双酶切体系
怎么设计?
答:
何必两步回收呢 切了一个灭活十分钟 继续切 或者换MBI的
酶
它有通用的
buffer
用2X的 不过NEB的酶是最好的了 没有必要换了
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