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sds蛋白电泳图怎么分析
sds电泳
条带
怎么分析
答:
通过一些对照样品来比较分析
。SDS-PAGE检测蛋白是一种定性的检测方法,图上蛋白条带不能做到精确定量。一般只能通过一些对照样品来比较分析sds电泳条带的量。比如用已知蛋白量的样品BSA和需检测的蛋白样品跑在附近的泳道,通过对比染色后样品的大小,颜色,深浅来估计出需检测蛋白样品的量。SDS是一种阴离子...
怎么
看
蛋白质电泳分析
结果图,以及它的原理是什么
答:
1.先进行等电聚焦
电泳
(按照蛋白等电点pI分离):在胶中加入双性电解质溶液,加上电场后建立稳定PH梯度,
蛋白质
溶液加入后建立电场,蛋白以不同PI分离开来。2.然后再进行
SDS
-PAGE(按照分子大小):将上一步的胶加上横向电场,同一PI中聚集的蛋白,由于分子量不同而分开。经染色(一般是银染)得到的...
怎么
看
SDS
聚丙烯酰胺凝胶
电泳
的结果
答:
要看你做的是什么样品了,
如果是蛋白质,染色后就能看到了
。如果是DNA,常用EB染色,再放到凝胶成像仪上看,紫外线照射会发荧光。
SDS
-PAGE
电泳图
,两边是marker,中间两个是样品,个人觉得跑胶现象不明显...
答:
同意楼下,不能看到很明显的条带,有可能是
蛋白
在提取过程中降解了。建议提取过程中使用蛋白酶抑制剂,低温操作。或者直接用上样缓冲液处理细胞。
sds
-page
电泳
测定
蛋白质
相对分子质量,
分析
看不到条带的地方是否有蛋白...
答:
SDS-PAGE电泳是一种将蛋白质按照分子量大小分离的方法,通常需要使用染色方法(如Coomassie blue染色)来观察电泳条带
。如果某些样品在电泳后看不到条带,则可能是由于样品中蛋白质浓度太低或者电泳条件不合适导致的。此时,可以使用Western blot等方法来检测是否存在目标蛋白质。如果Western blot结果呈阳性,...
泛素化
蛋白电泳
结果
怎么分析
答:
先进行等电聚焦
电泳
(按照蛋白等电点pI分离):在胶中加入双性电解质溶液,加上电场后建立稳定PH梯度,
蛋白质
溶液加入后建立电场,蛋白以不同PI分离开来。再进行
SDS
-PAGE(按照分子大小):将上一步的胶加上横向电场,同一PI中聚集的蛋白,由于分子量不同而分开。正常值参考范围 白蛋白:54.0%~65....
sds
电泳图 怎么
看
答:
SDS
-PAGE,以上样端为起点,迁移率与分子量的对数有线性关系,即跑得快的分子量小。
利用
sds
-page
电泳
方法
如何
考察干酪中
蛋白质
的水解情况?
答:
跑胶 染色 看胶图判断:如果是一条一条条带 说明
蛋白
没有被水解 如果不是条带,而是连续的一条带,说明被水解了
iptg诱导前后在
SDS电泳
结果中
怎么
看
答:
加入IPTG后有目标
蛋白
表达,正常情况下,两个泳道相比,应该能在诱导后的泳道看到有某一个比较明显的蛋白条带的增粗。这个条带的位置可以根据目标蛋白的预计分子量大小来找,当然有时候不是严格与预测分子量一致,会多少有点出入,但是表达成功的话,会有明显不一样的条带的。如果表达量不大,就需要...
如何
利用
SDS
-PAGE判定
蛋白质
的纯度和分子量
答:
SDS
-PAGE判定蛋白质的分子量:定义:R=de/do R为迁移率,de为
蛋白质电泳
迁移距离,do为溴酚蓝电泳迁移距离 则lgM=a-bR M为蛋白质分子量,a、b为常熟,a、b可由标准蛋白质(已知分子量的蛋白质)的迁移率算出。若蛋白质为单肽链蛋白质,则M为其分子量;若蛋白质为多肽链蛋白质,则其分子量...
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