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电泳上样量如何确定
电泳
时蛋白质
上样量
是多少
答:
单向
电泳
一般5-15uL,双向电泳根据胶条长度
确定上样量
,一般在100uL以上
琼脂糖凝胶
电泳
最大
上样量
答:
通常而言,
琼脂糖凝胶电泳的上样量应该在0。1至1。0μg之间
。如果上样量太低,DNA条带可能会过于模糊且难以读取,无法得出准确的结果。而如果上样量太高,则会使得DNA条带过于密集而无法区分,也会影响结果的准确性。因此,确定适当的上样量是进行琼脂糖凝胶电泳实验的关键因素之一。
凝胶
电泳上样量如何确定
答:
琼脂糖的话3到5微升就够了,变性垂直板的话5到10就可以,也可以再少一点
琼脂糖
电泳
梳子规格和
上样量
答:
琼脂糖
电泳
梳子规格和上样量如下:1、规格:梳子1.5mm13加6齿梳子1.5mm18加8齿梳子2.0mm3加2齿,齿窄而薄。2、上样量:根据电泳梳子的厚度和宽度
确定上样量
,至少需要上样50ng。
电泳
时loading buffer和样品DNA比例多少
答:
电泳时loading buffer和样品DNA比例是5:1
。即向5份DNA溶液中加入一份6×Loading Dye。例如:向10ul DNA Ladder中加入2ul 6×Loading Dye。6×Loading Dye的上样液含有10mM Tris-HCl(PH8.0),1mM EDTA,2.5% bromophenol blue,4% sucrose。推荐凝胶浓度或上样量:2.0~2.5%琼脂糖凝胶(溴化...
sdspage
电泳
样品的量应该多少
答:
sdspage
电泳
样品的量应该多少 浓度没有硬性要求,但
上样
时的蛋白质总量最好在50-100ug左右。条带才比较明显可见。如若上样前浓度很低,可进行冻干,把体积浓缩一下测完蛋白浓度后上样。常规样品都不用去管PH值,因为上样缓冲液中含有TRIS-HCl,缓冲力比较强,可以中和你样品PH.除非你样品中盐离子(...
western blot
电泳
时内参
上样量怎么确定
?
答:
如果给更具体的信息,我可以继续回答。Marker
上样量
同两个因素有关,一个是产品本身的浓度,这方面不需要知道确切的浓度,只需要看厂商的推荐用量即可;另一个是胶的性质,包括大小,厚度,浓度。如果楼主不愿研究得太细,只想试试看试出来就好了,建议尝试3-5ul每孔,然后看结果酌情调整。
抗体跑
电泳上样量
用多少
答:
30ug。使用30ug的抗体
上样量
可以确保
电泳
结果的充分检测,提高检测的灵敏度和准确性。
跑凝胶
电泳如何确定
每个孔的
上样量
?
答:
凝胶
电泳
每个孔的加
样量
都是一致的,如果不一致,需要换算,marker按照需求添加。有条件的话留一道空白的,注意别飘样就可以了。欢迎追问,求采纳
western blot
电泳
时内参
上样量怎么确定
答:
内参一般情况下的定义是正常样品中本来就有的相对更为稳定存在分子。所以,你做好实验的“阳性对照”、“阴性对照”,然后保持与“试验处理样品”同样的样品
上样量
,再然后对pvdf膜进行剪切以及分别的抗体(内参抗体、目标蛋白的特异性抗体)孵育就可以很放心地做后续分析了。
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